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沉默减数分裂内切酶1(EME1)抑制肝癌细胞增殖的机制

陈椿 王可欣 贺梦雯 李乐 王春艳 刘妍 纪冬

陈椿, 王可欣, 贺梦雯, 等. 沉默减数分裂内切酶1(EME1)抑制肝癌 细 胞 增 殖 的 机 制[J]. 临 床 肝 胆 病 杂 志 , 2024, 40(5): 982-988. DOI: 10.12449/JCH240518.
引用本文: 陈椿, 王可欣, 贺梦雯, 等. 沉默减数分裂内切酶1(EME1)抑制肝癌 细 胞 增 殖 的 机 制[J]. 临 床 肝 胆 病 杂 志 , 2024, 40(5): 982-988. DOI: 10.12449/JCH240518.
CHEN C, WANG KX, HE MW, et al. Silencing essential meiotic endonuclease 1 inhibits the proliferation of liver cancer cells: A study of related mechanisms[J]. J Clin Hepatol, 2024, 40(5): 982-988. DOI: 10.12449/JCH240518.
Citation: CHEN C, WANG KX, HE MW, et al. Silencing essential meiotic endonuclease 1 inhibits the proliferation of liver cancer cells: A study of related mechanisms[J]. J Clin Hepatol, 2024, 40(5): 982-988. DOI: 10.12449/JCH240518.

沉默减数分裂内切酶1(EME1)抑制肝癌细胞增殖的机制

DOI: 10.12449/JCH240518
基金项目: 

北京市自然科学基金面上项目 (7222173)

医学伦理声明本研究于2020年7月14日通过解放军总医院第五医学中心伦理委员会审批,批号:2020055D。
利益冲突声明:本文不存在任何利益冲突。
作者贡献声明:纪冬负责课题设计及拟定写作思路;陈椿、王可欣、贺梦雯进行实验研究及撰写论文;王春艳、刘妍、纪冬指导撰写文章并最后定稿。
详细信息
    通信作者:

    刘妍, liuyan5360@163.com (ORCID: 0000-0003-1498-4314)

    纪冬, jidg302@126.com (ORCID: 0000-0001-8214-462X)

Silencing essential meiotic endonuclease 1 inhibits the proliferation of liver cancer cells: A study of related mechanisms

Research funding: 

Beijing Municipal National Science Foundation (7222173)

More Information
  • 摘要:   目的  探讨减数分裂内切酶1(EME1)在肝癌组织中的表达及其对肝癌细胞生物学行为的影响。  方法  筛选TCGA数据库肝癌样本中的差异表达基因。采用免疫组化和Western Blot分析EME1在肝癌组织中的表达丰度。通过短发夹RNA(shRNA)构建慢病毒并感染BEL-7404细胞干扰EME1基因表达,分为沉默组(shEME1)和对照组(shCtrl)。通过实时荧光定量PCR法和Western Blot检测两组EME1mRNA和蛋白表达水平,Celigo计数法及MTT活性检测细胞增殖率,流式细胞术检测细胞周期,Caspase3/7活性检测细胞凋亡。两组间比较采用成组t检验。  结果  TCGA结果显示EME1的mRNA表达水平在肝癌组织中是癌旁组织的18.9倍(114.5±153.0 vs 8.0±7.2,t=5.00,P<0.001);EME1的蛋白表达水平在肝癌组织中是癌旁组织的7.0倍(免疫组化检测,8.4±2.6 vs 1.2±0.4,t=7.55,P<0.001)和2.5倍(Western Blot检测,249.0%±35.5% vs 100.0%±77.8%,t=3.02,P<0.05)。慢病毒感染后,相对于对照组,沉默组EME1的mRNA表达水平下降了29.9%(29.9%± 0.9% vs 100.0%±3.6%,t=32.82,P<0.001),蛋白表达水平显著下降了35.7%(35.7%±14.9% vs 100.0%±28.9%,t=3.42,P<0.05);细胞计数下降了45.1%(4 053±167 vs 8 988±477,t=16.91,P<0.001)、细胞活性下降至66.9%(0.518±0.046 vs 0.774±0.022,t=8.74,P<0.001)及细胞克隆形成能力下降至29.0%(75±6 vs 260±9,t=28.92,P<0.001)。与对照组比较,沉默组G1期细胞(49.9% vs 44.0%,t=8.96,P<0.001)比例增多,G2/M期(15.9% vs 17.9%,t=9.13,P<0.001)与S期(34.2% vs 38.1%,t=6.91,P<0.001)的细胞比例减少;Caspase3/7活性增强了1.5倍(145.8%±5.9% vs 100.0%±2.3%,t=12.50,P<0.001)。  结论  EME1在肝癌组织中高表达,沉默EME1基因可抑制肝癌细胞增殖,促进细胞凋亡。

     

  • 肝细胞癌是全球癌症相关死亡的第三大常见原因,对于晚期肝癌患者,靶向治疗的效果仍不能满足临床需求1-5,寻找新的基因靶点可进一步提升疗效及安全性,成为目前肝癌治疗领域的研究热点。减数分裂内切酶1(essential meiotic endonuclease 1,EME1)编码的蛋白质可与MUS81形成核酸内切酶复合物,作用于特定的DNA底物,包括Holiday连接、3′末端翘翼结构以及复制叉结构,在DNA链间交联、DNA双链断裂后修复过程中对重组中间产物的分解发挥着关键作用6。既往研究7-9发现,EME1高表达是膀胱癌、乳腺癌及肾透明细胞癌不良预后的高危因素,但其在肝癌中的表达和作用尚未见报道。本研究从TCGA数据库入手,通过生物信息学寻找肝癌组织中的高表达基因EME1,并在肝癌组织/癌旁组织中进行验证,通过基因沉默探讨EME1对肝癌细胞生物学行为的影响,以期鉴定新的治疗靶点。

    人肝癌细胞BEL-7404/7402、Hep3B及人胚肾细胞293T均为本单位感染病研究所保存。慢病毒载体购自上海吉凯基因公司。鼠源EME1单克隆抗体购自美国Santa Cruz公司,HRP标记山羊抗小鼠的二抗检测试剂盒购自北京中杉金桥公司。HiScript Ⅲ All-in one RT、SuperMix Perfect for qPCR逆转录试剂和Taq Pro Universal SYBR qPCR Master Mix购自南京诺唯赞公司。RPMI 1640和MEM培养基购自美国Corning公司,胎牛血清(FBS)购自美国Geniala公司,四甲基偶氮唑盐(MTT)购自北京鼎国昌盛公司,Caspase-Glo® 3/7 Assay试剂盒购自美国Promega公司,碘化丙啶(PI)购自吉至生化公司。

    下载TCGA数据库中肝细胞癌样本的mRNA seq表达谱,利用R软件中的“edge”包筛选癌及癌旁组织中高表达基因。

    BEL-7404/7402细胞在含10%FBS的RPMI 1640细胞培养液、Hep3B细胞在含10%FBS的MEM细胞培养液中37 ℃、5% CO2条件下培养。细胞传代使用0.25%胰蛋白酶消化,按照1∶3比例传代。

    石蜡切片经脱蜡、水化、抗原修复后,FBS封闭后加入EME1一抗,4 ℃孵育过夜,加入二抗37 ℃孵育20 min,DAB显色,苏木精复染,中性树胶封片,镜检评分。染色结果进行半定量分析,以染色强度评分[阴性为0分,淡黄色(弱阳性)为1分,棕黄色(阳性)为2分,棕褐色(强阳性)为3分]和阳性细胞范围评分[≤25%为1分,26%~50%计为2分,51%~75%为3分,>75%为4分]乘积作为最终结果。

    EME1 短发夹RNA(shRNA)干扰序列为CTGAGAAGACAGGAAAGAA,两端分别添加AgeI(A^CCGGT)和EcoRI(G^AATTC)酶切位点黏性末端,并在正链3′端添加终止信号(TTTTT),反链5′端添加终止信号互补序列(AAAAA),合成DNA Oligo。双酶切hU6-MCS-CMV-EGFP慢病毒载体使其线性化,将DNA Oligo与载体质粒相连后转化感受态细胞,之后PCR扩增及测序鉴定(表1)。提取鉴定正确的质粒,利用第二代慢病毒包装系统,穿梭质粒GV115、包装质粒psPAX2、包膜质粒pMD2.G共转染293T细胞,转染后48 h进行病毒收获,浓缩与纯化慢病毒。

    表  1  EME1 shRNA引物序列
    Table  1.  Sequences of essential meiotic structure-specific endonuclease 1 shRNA
    名称 序列(5′-3′)
    shRNA 正义链:CCGGCCCTGAGAAGACAGGAAAGAAC TCGAGTTCTTTCCTGTCTTCTCAGGGTTTTTG
    反义链:AATTCAAAAACCCTGAGAAGACAGGAAAG AACTCGAGTTCTTTCCTGTCTTCTCAGGG
    shRNA-NC 正义链:CCGGTTCTCCGAACGTGTCACGTTTCA AGAGAAGTGACACGTTCGGAGAATTTTTG 反义链:AATTCAAAAATTCTCCGAACGTGTCAC GTTCTCTT GAAACGTGACACGTTCGGAGAA
    鉴定引物 正义链:CCTATTTCCCATGATTCCTTCATA
    反义链:GTAATACGGTTATCCACG
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    对数生长期的BEL-7404细胞接种于6孔板(2×105个/孔),培养至铺板量达30%后分别加入shRNA干扰表达慢病毒和阴性对照慢病毒,感染12 h后更换完全培养基继续培养。感染72 h后,荧光显微镜观察细胞感染效率。以GADPH为内参照,进行实时荧光定量PCR(RT-qPCR)检测(表2),2-△△Ct法计算EME1相对表达量。

    表  2  各基因引物序列
    Table  2.  primer sequences
    名称 序列(5′-3′)
    EME1 正义链: TGACTTCAACAGCGACACCCA
    反义链: CACCCTGTTGCTGTAGCCAAA
    GAPDH 正义链: TCTGAGGAGTTGCCAACATTTG
    反义链: GGCTTCACAATCTGAGATGTCAA
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    制备样品,每孔上样量为30 μg,10%的SDS-PAGE电泳分离,并转移到PVDF膜上,室温封闭1 h,一抗(1∶800)4 ℃孵育过夜,TBST洗膜。二抗(1∶5 000)室温孵育1 h,TBST洗膜。化学发光法(ECL法)检测条带,以GAPDH为内参照,用Image J软件进行灰度值分析。

    对数生长期细胞接种于96孔板(2×103个/孔),每天用Celigo检测读板。另设置一组进行MTT检测,培养终止前4 h加入5 mg/mL的MTT溶液20 μL,继续培养4 h后吸取培养液,每孔加入100 μL二甲基亚砜,振荡器振荡2 min,检测490 nm处的吸光值。

    对数生长期细胞接种于6孔板(800个/孔),持续培养10 d后使用4%多聚甲醛固定细胞30 min,PBS洗涤后加入500 μL/孔吉姆萨染液(10 min),ddH2O洗涤细胞,晾干后拍照并克隆计数。

    对数生长期细胞接种于96孔板(1×104个/孔),Caspase-Glo3/7缓冲液10 mL溶解Caspase-Glo3/7冻干粉,每孔加入Caspase-Glo反应液100 μL,500 r/min离心30 min,室温孵育2 h后使用酶标仪测定信号强度。

    收集处于对数生长期的细胞,用4 ℃预冷的D-Hanks洗涤细胞并沉淀,用4 ℃预冷的75%乙醇固定细胞1 h。1 300 r/min离心5 min,去固定液,用4 ℃预冷的D-Hanks洗涤细胞沉淀1次。加入1 mL的细胞染色液重悬,上机检测。

    采用R语言软件4.2.1进行统计分析,每个实验均设置3个复孔,数据以x¯±s表示,两组间比较采用成组t检验。P<0.05为差异有统计学意义。

    TCGA数据库筛选出50对肝癌样本,EME1 mRNA在肝癌组织(114.5±153.0)的表达量是癌旁组织(8.0±7.2)的18.9倍(t=5.00,P<0.001)(图1a)。RT-qPCR结果显示,人肝癌细胞BEL-7404/7402和Hep3B中EME1 mRNA相对表达量(ΔCT值)分别为9.25、10.32和10.89,均<12,为高丰度表达(图1b)。

    注: a,TCGA数据库分析EME1 mRNA表达水平;b,BEL-7404/7402、Hep3B细胞的EME1 mRNA表达水平。
    图  1  EME1 mRNA在肝癌/癌旁组织中的表达情况
    Figure  1.  Expression level of EME1 mRNA in HCC/paracancerous tissues

    选取病理确诊的3例肝癌患者的手术切除癌/癌旁组织进行Western Blot分析,结果显示肝癌组织EME1蛋白水平(249.0%± 35.5%)是癌旁组织(100.0%±77.8%)的2.5倍(t=3.02,P<0.05)(图2a、b)。选取病理确诊的5例肝癌患者的手术切除肝癌组织/癌旁组织进行免疫组化分析,结果显示肝癌组织EME1蛋白水平(8.4±2.6)是癌旁组织(1.2±0.4)的7.0倍(t=7.55,P<0.001)(图2c、d)。

    注: a,Western Blot结果;b,Western Blot的定量分析;c,免疫组化结果(×200);d,免疫组化的半定量分析。
    图  2  EME1在肝癌/癌旁组织中的表达情况
    Figure  2.  Expression level of EME1 in HCC/paracancerous tissues

    荧光倒置相差显微镜观察慢病毒感染72 h后的BEL-7404细胞,结果显示感染效率达到80%以上,细胞状态正常(图3)。RT-qPCR结果显示,沉默组(shEME1)EME1 mRNA表达水平(29.9%±0.9%)相较于阴性对照组(shCtrl)(100.0%± 3.6%)显著降低(t=32.82,P<0.001)(图4a);Western Blot结果显示,shEME1组EME1蛋白表达水平(35.7%±14.9%)相较于shCtrl组(100.0%±28.9%)显著降低(t=3.42,P<0.05)(图4b),表明EME1稳定沉默的肝癌细胞株BEL-7404构建成功。

    图  3  慢病毒感染BEL-7404细胞48 h后荧光显微镜结果(×100)
    Figure  3.  Fluorescence microscopie observation of BEL-7404 after transfection for 48 hours (×100)
    注: a,RT-qPCR检测不同处理组EME1 mRNA表达水平;b,Western Blot检测不同处理组EME1蛋白表达水平。
    图  4  BEL-7404细胞的EME1沉默效率
    Figure  4.  EME1 silencing efficiency in BEL-7404 cells

    Celigo观察培养1~5天的BEL-7404细胞,结果显示随着培养时间的延长,相对于对照组,沉默组细胞数量显著下降,培养5天时沉默组为4 053±167,对照组为8 988±477,细胞数量下降了45.1%(t=16.91,P<0.001)(图5a、b)。MTT检测培养1~5天的BEL-7404细胞在490 nm处的吸光值,相对于对照组,沉默组细胞吸光值显著下降,培养5天时沉默组为0.518±0.046,对照组为0.774±0.022,细胞活性下降了66.9%(t=8.74,P<0.001)(5c)。培养10天后,沉默组克隆数(75±6)较对照组(260±9)显著减少,细胞克隆形成能力下降了29.0%(t=28.92,P<0.001)(图5d、e)。表明沉默EME1降低BEL-7404细胞的增殖能力。

    注: a,Celigo计数仪在荧光视野下对BEL-7404细胞的单视野成像;b,Celigo计数仪计数单孔BEL-7404细胞的数量;c,MTT法检测BEL-7404细胞的增殖情况;d、e,BEL-7404细胞的克隆形成情况与克隆计数。
    图  5  不同处理组BEL-7404细胞的增殖情况
    Figure  5.  Proliferation of BEL-7404 cells in different treatment groups

    流式细胞术检测慢病毒感染5天后的BEL-7404细胞周期,沉默组的G1期细胞比例显著高于对照组(49.9%±0.8% vs 44.0%±0.9%,t=8.96,P<0.001),G2/M期细胞比例显著低于对照组(15.9%±0.2% vs 17.9%±0.7%,t=9.13,P<0.001),S期细胞比例显著低于对照组(34.2%±0.6% vs 38.1%±0.5%,t=6.91,P<0.001)(图6)。

    图  6  不同处理组BEL-7404细胞周期情况
    Figure  6.  Cell cycle of BEL-7404 cells in different treatment groups

    Caspase3/7活性分析显示感染shRNA慢病毒5天后,沉默组细胞的Caspase3/7活性(145.8%±5.9%)较对照组组(100.0%± 2.3%)显著升高1.5倍(t=12.50,P<0.001)(图7)。

    图  7  不同处理组BEL-7404细胞的Caspase3/7活性
    Figure  7.  Caspase3/7 activity of BEL-7404 cells in the negative control group and the experimental group

    EME1对于哺乳动物细胞中 DNA 代谢的各个方面都很重要,Guo等10研究发现EME1与胃癌细胞AGS和MGC-803的增殖及侵袭能力密切相关,沉默EME1基因表达可通过抑制蛋白激酶B活化,降低糖原合酶激酶-3β、细胞周期蛋白D1,从而抑制癌细胞增殖和侵袭,促进细胞凋亡。基于中国广西人群的研究11发现EME1的Glu69Asp错义多态性与肝癌风险增加显著相关。EME1的另一外显子Ile350Thr变异会提高乳腺癌的易感性12

    本研究发现沉默EME1的表达可降低肝癌的增殖能力。正常细胞中同源重组(homologous recombination,HR)相关蛋白受到高度的调控,对DNA序列具有相当高的特异性,一旦失调就会导致基因组的不稳定性。MUS81/EME1在异常的时间节点被激活,可能会导致细胞周期的阻滞、DNA向子细胞的不对称分布以及非整倍体。相反,过早的磷酸化会刺激Holiday连接交叉。HR途径的过表达可能引起DNA重排,导致癌基因活化或者抑癌基因的杂合性的缺失13。HR介导基因表型的持续变化为肿瘤细胞提供生长优势,恶性表型的不断发展以及耐药性的产生。有研究14发现,多发性骨髓瘤细胞和患者样本中的HR酶活性升高密切相关,抑制HR活性可显著减少新基因表型的产生,上调HR活性会增加基因突变的数量。持续获得HR介导的新基因,可能会导致癌基因的激活,促进肿瘤或耐药表型的获得。笔者推测高表达水平的EME1蛋白可能通过催化DNA-RNA杂交的形成导致基因组不稳定,或通过促成同源性驱动的易出错过程(如单链退火、复制模板切换和非等位HR)来促进突变。

    结果表明,沉默EME1表达后Caspase3/7活性显著增高,有效促进细胞凋亡。细胞凋亡主要由Caspase家族蛋白酶执行,Caspase3/7负责对特定的细胞底物进行关键的切割,导致最终的凋亡细胞死亡。癌前病变的DNA损伤可通过诱导细胞凋亡来清除潜在的有害细胞从而阻断肿瘤生长。这一死亡过程的失控与异常的细胞增殖、肿瘤的发生和进展有关,细胞凋亡的失调被认为是癌症的标志之一15。本研究同时发现沉默EME1表达后G1期细胞比例高于shCtrl组,表明抑制EME1表达能有效阻滞细胞周期,抑制肿瘤细胞生长。EME1虽然在G2/M期活性受到严格的调控,但其在细胞全周期中都能检测到。有研究16证明有丝分裂中Cdk1活性的失调,会过早激活MUS81/EME1的有丝分裂同源重组,可能会诱导DNA损伤应答缺陷相关的细胞周期改变。蛋白激酶2(CK2)通过磷酸化调控MUS81/EME1复合物的活性,从而在有丝分裂和DNA复制应激后发挥不同的功能。在细胞有丝分裂过程中,CK2通过磷酸化MUS81/EME1增强其活性,有助于维持基因组的稳定性。但在细胞受到DNA复制应激后,CK2过度活化MUS81/EME1复合物会导致DNA损伤和染色体不稳定性17。事实上,已经在许多肿瘤中发现CK2过表达18-19,因此可以推测CK2可通过提高MUS81/EME1的生物学功能,促进人类基因组的不稳定性,还需要进一步研究确定肝癌中CK2的表达水平与MUS81/EME1的关系。在检查点激酶缺陷1的细胞中,由于核苷酸的缺乏不足以维持有丝分裂期DNA合成,MUS81/EME1复合物切割有丝分裂期间合成的新生DNA20。这种机制并不会导致细胞的死亡,而是造成子细胞遗传了受损的DNA,MUS81/EME1复合物对晚期复制产物的异常处理会导致基因组不稳定。在FIBP敲低的肺腺癌中,EME1的过表达逆转了其对肺腺癌细胞增殖的抑制作用21。该研究结果显示,EME1的过表达显著减少了γ-H2AX病灶形成,表明EME1参与肺腺癌细胞增殖和放射耐药性。FIBP与STAT3互作通过增强其磷酸化从而提高转录活性,并诱导靶基因EME1的表达。外源性STAT3的过表达也提高了FIBP缺陷肺腺癌细胞中的EME1表达水平,这一结果在另一项研究22中也得到证实。此外,肿瘤细胞中的某些特异性的细胞因子常通过结合EME1的启动子上调其表达。

    综上,EME1在肝癌组织中高表达,并在细胞功能学层面证明了沉默EME1基因可抑制肝癌细胞的增殖,阻滞细胞周期,诱导肝癌细胞的凋亡,为临床治疗提供了新思路。此外本研究对EME1在肝癌中发生发展限于细胞的功能性实验,后续还需对动物模型和分子机制进行下一步的探索。

  • 注: a,TCGA数据库分析EME1 mRNA表达水平;b,BEL-7404/7402、Hep3B细胞的EME1 mRNA表达水平。

    图  1  EME1 mRNA在肝癌/癌旁组织中的表达情况

    Figure  1.  Expression level of EME1 mRNA in HCC/paracancerous tissues

    注: a,Western Blot结果;b,Western Blot的定量分析;c,免疫组化结果(×200);d,免疫组化的半定量分析。

    图  2  EME1在肝癌/癌旁组织中的表达情况

    Figure  2.  Expression level of EME1 in HCC/paracancerous tissues

    图  3  慢病毒感染BEL-7404细胞48 h后荧光显微镜结果(×100)

    Figure  3.  Fluorescence microscopie observation of BEL-7404 after transfection for 48 hours (×100)

    注: a,RT-qPCR检测不同处理组EME1 mRNA表达水平;b,Western Blot检测不同处理组EME1蛋白表达水平。

    图  4  BEL-7404细胞的EME1沉默效率

    Figure  4.  EME1 silencing efficiency in BEL-7404 cells

    注: a,Celigo计数仪在荧光视野下对BEL-7404细胞的单视野成像;b,Celigo计数仪计数单孔BEL-7404细胞的数量;c,MTT法检测BEL-7404细胞的增殖情况;d、e,BEL-7404细胞的克隆形成情况与克隆计数。

    图  5  不同处理组BEL-7404细胞的增殖情况

    Figure  5.  Proliferation of BEL-7404 cells in different treatment groups

    图  6  不同处理组BEL-7404细胞周期情况

    Figure  6.  Cell cycle of BEL-7404 cells in different treatment groups

    图  7  不同处理组BEL-7404细胞的Caspase3/7活性

    Figure  7.  Caspase3/7 activity of BEL-7404 cells in the negative control group and the experimental group

    表  1  EME1 shRNA引物序列

    Table  1.   Sequences of essential meiotic structure-specific endonuclease 1 shRNA

    名称 序列(5′-3′)
    shRNA 正义链:CCGGCCCTGAGAAGACAGGAAAGAAC TCGAGTTCTTTCCTGTCTTCTCAGGGTTTTTG
    反义链:AATTCAAAAACCCTGAGAAGACAGGAAAG AACTCGAGTTCTTTCCTGTCTTCTCAGGG
    shRNA-NC 正义链:CCGGTTCTCCGAACGTGTCACGTTTCA AGAGAAGTGACACGTTCGGAGAATTTTTG 反义链:AATTCAAAAATTCTCCGAACGTGTCAC GTTCTCTT GAAACGTGACACGTTCGGAGAA
    鉴定引物 正义链:CCTATTTCCCATGATTCCTTCATA
    反义链:GTAATACGGTTATCCACG
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    表  2  各基因引物序列

    Table  2.   primer sequences

    名称 序列(5′-3′)
    EME1 正义链: TGACTTCAACAGCGACACCCA
    反义链: CACCCTGTTGCTGTAGCCAAA
    GAPDH 正义链: TCTGAGGAGTTGCCAACATTTG
    反义链: GGCTTCACAATCTGAGATGTCAA
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  • [1] SUNG H, FERLAY J, SIEGEL RL, et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2021, 71( 3): 209- 249. DOI: 10.3322/caac.21660.
    [2] LLOVET JM, KELLEY RK, VILLANUEVA A, et al. Hepatocellular carcinoma[J]. Nat Rev Dis Primers, 2021, 7: 6. DOI: 10.1038/s41572-020-00240-3.
    [3] CHEN SH, WANG CY, GUO C, et al. Establishment of a nomogram model for predicting the survival of hepatitis B virus-related hepatocellular carcinoma[J]. J Clin Hepatol, 2022, 38( 7): 1566- 1571. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.07.020.

    陈松海, 王春艳, 郭畅, 等. 预测HBV相关肝细胞癌生存的列线图模型的建立[J]. 临床肝胆病杂志, 2022, 38( 7): 1566- 1571. DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.07.020.
    [4] WANG JJ, WANG KX, CHEN C, et al. Survival analysis and development of a prognostic nomogram for patients with hepatitis B virus-associated hepatocellular carcinoma[J]. Heliyon, 2023, 9( 10): e20850. DOI: 10.1016/j.heliyon.2023.e20850.
    [5] JI D, CHEN Y, BI JF, et al. Entecavir plus Biejia-Ruangan compound reduces the risk of hepatocellular carcinoma in Chinese patients with chronic hepatitis B[J]. J Hepatol, 2022, 77( 6): 1515- 1524. DOI: 10.1016/j.jhep.2022.07.018.
    [6] GWON GH, JO A, BAEK K, et al. Crystal structures of the structure-selective nuclease Mus81-Eme1 bound to flap DNA substrates[J]. EMBO J, 2014, 33( 9): 1061- 1072. DOI: 10.1002/embj.201487820.
    [7] HAN YY, ZHENG QY, TIAN Y, et al. Identification of a nine-gene panel as a prognostic indicator for recurrence with muscle-invasive bladder cancer[J]. J Surg Oncol, 2019, 119( 8): 1145- 1154. DOI: 10.1002/jso.25446.
    [8] VÉQUAUD E, DESPLANQUES G, JÉZÉQUEL P, et al. Survivin contributes to DNA repair by homologous recombination in breast cancer cells[J]. Breast Cancer Res Treat, 2016, 155( 1): 53- 63. DOI: 10.1007/s10549-015-3657-z.
    [9] PENG L, LIANG J, WANG Q, et al. A DNA damage repair gene signature associated with immunotherapy response and clinical prognosis in clear cell renal cell carcinoma[J]. Front Genet, 2022, 13: 798846. DOI: 10.3389/fgene.2022.798846.
    [10] GUO ZG, LIANG EB, LI W, et al. Essential meiotic structure-specific endonuclease1(EME1) promotes malignant features in gastric cancer cells via the Akt/GSK3B/CCND1 pathway[J]. Bioengineered, 2021, 12( 2): 9869- 9884. DOI: 10.1080/21655979.2021.1999371.
    [11] WANG YX, HUANG XL, SU ZH, et al. The Glu69Asp polymorphism of EME1 gene is associated with an increased risk of hepatocellular carcinoma in Guangxi population, China[J]. Int J Gen Med, 2022, 15: 7855- 7866. DOI: 10.2147/IJGM.S383261.
    [12] ZHAO JW, LIU L, ZHANG AQ, et al. Effect of EME1 exon variant Ile350Thr on risk and early onset of breast cancer in southern Chinese women[J]. J Biomed Res, 2013, 27( 3): 193- 201. DOI: 10.7555/JBR.27.20130013.
    [13] SUZUKI T, YASUI M, HONMA M. Mutator phenotype and DNA double-strand break repair in BLM helicase-deficient human cells[J]. Mol Cell Biol, 2016, 36( 23): 2877- 2889. DOI: 10.1128/MCB.00443-16.
    [14] SHAMMAS MA, SHMOOKLER REIS RJ, KOLEY H, et al. Dysfunctional homologous recombination mediates genomic instability and progression in myeloma[J]. Blood, 2009, 113( 10): 2290- 2297. DOI: 10.1182/blood-2007-05-089193.
    [15] FULDA S. Tumor resistance to apoptosis[J]. Int J Cancer, 2009, 124( 3): 511- 515. DOI: 10.1002/ijc.24064.
    [16] SZAKAL B, BRANZEI D. Premature Cdk1/Cdc5/Mus81 pathway activation induces aberrant replication and deleterious crossover[J]. EMBO J, 2013, 32( 8): 1155- 1167. DOI: 10.1038/emboj.2013.67.
    [17] PALMA A, PUGLIESE GM, MURFUNI I, et al. Phosphorylation by CK2 regulates MUS81/EME1 in mitosis and after replication stress[J]. Nucleic Acids Res, 2018, 46( 10): 5109- 5124. DOI: 10.1093/nar/gky280.
    [18] GUO YG, ZHU ZH, HUANG ZY, et al. CK2-induced cooperation of HHEX with the YAP-TEAD4 complex promotes colorectal tumorigenesis[J]. Nat Commun, 2022, 13( 1): 4995. DOI: 10.1038/s41467-022-32674-6.
    [19] KWON J, ZHANG JM, MOK B, et al. CK2-mediated phosphorylation upregulates the stability of USP13 and promotes ovarian cancer cell proliferation[J]. Cancers, 2022, 15( 1): 200. DOI: 10.3390/cancers15010200.
    [20] PITRODA SP, PASHTAN IM, LOGAN HL, et al. DNA repair pathway gene expression score correlates with repair proficiency and tumor sensitivity to chemotherapy[J]. Sci Transl Med, 2014, 6( 229): 229ra42. DOI: 10.1126/scitranslmed.3008291.
    [21] XU YH, LI J, ZHU KK, et al. FIBP interacts with transcription factor STAT3 to induce EME1 expression and drive radioresistance in lung adenocarcinoma[J]. Int J Biol Sci, 2023, 19( 12): 3816- 3829. DOI: 10.7150/ijbs.83134.
    [22] WEINANDY A, PIROTH MD, GOSWAMI A, et al. Cetuximab induces eme1-mediated DNA repair: A novel mechanism for cetuximab resistance[J]. Neoplasia, 2014, 16( 3): 207- 220, 220.e1- 220. e4. DOI: 10.1016/j.neo.2014.03.004.
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出版历程
  • 收稿日期:  2023-10-11
  • 录用日期:  2023-12-11
  • 出版日期:  2024-05-25
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