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超重人群中健康者与非酒精性脂肪性肝病患者的临床特征及血清脂质组学分析
DOI: 10.12449/JCH240211
Clinical features and serum lipidomic profile of patients with nonalcoholic fatty liver disease and healthy individuals in the overweight population
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摘要:
目的 探究超重人群中，非酒精性脂肪性肝病（NAFLD）患者与健康人的临床指标与脂质代谢差异。 方法 本研究将体质量指数（BMI）>23 kg/m2定义为超重人群，选取2020年8月—2021年4月上海中医药大学附属普陀医院收治的62例超重NAFLD患者纳入超重NAFLD组，另选取同期超重健康体检者50例作为对照。记录所有受试者的临床信息以及血液生化指标数据。应用超高效液相色谱-串联质谱法（UPLC-MS/MS）进行血清脂质组学分析；使用主成分分析法和正交偏最小二乘法判别分析对脂质组学数据进行多元统计分析。计数资料两组间比较采用χ2检验。计量资料两组间比较采用成组t检验或Wilcoxon秩和检验。 结果 超重NAFLD组BMI显著高于超重对照组（Z=-2.365，P=0.018）。血清学指标中，超重NAFLD组红细胞、血红蛋白、红细胞比容、尿酸、总蛋白、球蛋白、ALP、GGT、ALT、AST、胆碱酯酶、低密度脂蛋白、总胆固醇、甘油三酯、载脂蛋白B、血糖水平均显著高于超重对照组（P值均<0.05）。脂质组学分析结果显示两组间脂质代谢具有明显差异，共鉴定出差异性脂质（VIP值>1，P<0.05）493个，其中超重NAFLD组中有143个脂质显著上调，350个脂质显著下调。超重NAFLD组的平均脂肪酸总量是超重对照组的3.6倍。超重NAFLD组不饱和键数>3的甘油三酯含量较超重对照组降低（P<0.001），而不饱和键数≤3的甘油三酯含量较超重对照组增多（P<0.001）。 结论 超重NAFLD患者的部分生化指标及脂质代谢产物明显异于超重健康人，血液内脂肪酸明显升高，甘油三酯中的含饱和脂肪链的种类显著升高。 Abstract:objective To investigate the differences in clinical indices and lipid metabolism between the patients with nonalcoholic fatty liver disease （NAFLD） and healthy individuals in the overweight population. Methods In this study， body mass index （BMI）>23 kg/m2 was defined as overweight. A total of 62 overweight patients with NAFLD who were admitted to Putuo Hospital Affiliated to Shanghai University of Traditional Chinese Medicine from August 2020 to April 2021 were enrolled as overweight NAFLD group， and 50 overweight individuals who underwent physical examination during the same period of time were enrolled as control group. Clinical information and blood biochemical parameters were recorded for all subjects. Ultra-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry was used to analyze serum lipidomic profile， and principal component analysis and orthogonal partial least squares-discriminant analysis were used to perform the multivariate statistical analysis of lipidomic data. The chi-square test was used for comparison of categorical data between two groups， and the independent-samples t test or the Wilcoxon rank-sum test was used for comparison of continuous data between two groups. Results The overweight NAFLD group had a significantly higher BMI than the overweight control group （Z=-2.365， P=0.018）. As for serological markers， compared with the overweight control group， the overweight NAFLD group had significantly higher levels of red blood cells， hemoglobin， hematocrit， uric acid， total protein， globulin， alkaline phosphatase， gamma-glutamyl transpeptidase， alanine aminotransferase， aspartate aminotransferase， cholinesterase， low-density lipoprotein， total cholesterol， triglyceride， apolipoprotein B， and blood glucose （all P<0.05）. The lipidomic analysis showed that there was a significant difference in lipid metabolism between the two groups， and a total of 493 differentially expressed lipids were identified （VIP value>1， P<0.05）， among which 143 lipids were significantly upregulated and 350 lipids were significantly downregulated in the overweight NAFLD group. The mean total fatty acid content in the overweight NAFLD group was 3.6 times that in the overweight control group. Compared with the overweight control group， the overweight NAFLD group had a significant reduction in the content of triglyceride with>3 unsaturated bonds （P<0.001） and a significant increase in the content of triglyceride with ≤3 unsaturated bonds （P<0.001）. Conclusion Compared with healthy overweight individuals， overweight NAFLD patients tend to have significant abnormalities in some biochemical parameters and lipid metabolites， with significant increases in the content of fatty acid in blood and the types of saturated fat chains in triglycerides. -
Key words:
- Non-Alcoholic Fatty Liver Disease /
- Overweight /
- Signs and Symptoms /
- Lipidomics
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肝移植是国际公认的终末期肝硬化的最佳治疗手段［1］，但受制于供体缺乏、费用昂贵以及移植相关并发症等限制，使部分患者在等待供肝期间死亡［2-4］。近年来，干细胞移植成为肝硬化治疗研究的新热点，尤其自体骨髓来源间充质干细胞（bone marrow-derived mesenchymal stem cell，BMSC）具有易获取、无排异反应及伦理问题等优势，已在乙型肝炎肝硬化、酒精性肝硬化等治疗中初显成效［5-8］，但也有研究［9］发现BMSC移植后具有向肌成纤维细胞分化的潜能。因此，如何提高BMSC治疗终末期肝硬化的效果显得尤为重要。课题组前期研究［10］表明，骨髓来源巨噬细胞（bone marrow-derived macrophage，BMDM）M2亚型（M2-BMDM）可有效抑制四氯化碳（CCl4）诱导大鼠肝纤维化进展，BMSC移植可有效抑制胆汁性肝纤维化进展［11］。但来源于M2-BMDM生长微环境的BMSC（命名为BMSCM2）移植是否能够进一步提高其对肝硬化的治疗效应尚不清楚。本研究观察了BMSCM2移植对CCl4/2-乙酰氨基芴（CCl4/2-acetylaminofluorene，CCl4/2-AAF）诱导大鼠肝硬化进展的影响。
1. 材料与方法
1.1 材料
小鼠肌成纤维细胞L929细胞株购于中国科学院细胞库。DMEM/F12（Dulbecco’s Modified Eagle Media： Nutrient Mixture F-12）细胞培养基购于GIBICO公司。BMSC成脂诱导试剂盒（RAXMX-90031）、BMSC成骨诱导试剂盒（RAXMX-90021）购于Cyagen公司，BMSC细胞周期检测试剂盒（C543）购于DOJINDO公司。α-平滑肌肌动蛋白抗体（α-smooth muscle actin，α-SMA，ab124964）、CD68抗体（ab125212）、肝细胞核因子4α抗体（hepatocyte nuclear factor 4 alpha， HNF-4α，ab41898）、Sox9（sex determining region Y-box 9）抗体（ab185230）、上皮细胞黏附分子抗体（epithelial cell adhesion molecule，EpCam，ab71916）均购于Abcam公司；3-磷酸甘油醛脱氢酶抗体（GAPDH，60004-1-Ig）、细胞角蛋白7抗体（cytokeratin7，CK7：15539-1-AP）、CK19抗体（10712-1-AP）均购于Proteintech公司；白蛋白抗体（Alb，sc271605）购于Stan cruz Biotechnology公司。实时荧光定量聚合酶链式反应（RT-PCR）引物序列由Takara公司设计合成，逆转录试剂盒购自Takara公司，Synergy Brands（SYBR）荧光染料购自TOYOBO公司。肝组织羟脯氨酸（hydroxyproline，Hyp）含量测定试剂盒购于南京建成生物工程研究所。
1.2 大鼠BMDM分离、极化及鉴定
参照课题组已经建立的方法［10］。分离得到的BMDM使用DMEM/F12+20% L929+10% FBS培养7 d后，即可获得成熟的M2-BMDM。
1.3 大鼠BMSC的分离与鉴定
参照课题组已经建立的方法［11］分离大鼠BMSC，诱导成脂、成骨分化，并鉴定细胞周期。
1.4 实验动物
Wistar雄性大鼠24只，SPF级，体质量160～180 g，购自上海斯莱克实验动物有限公司，实验动物生产许可证编号：SCXK（沪）2022-0004，于上海中医药大学实验动物中心饲养、造模和观察，实验动物使用许可证编号：SYXK（沪）2014-0008。
1.5 模型制备与分组干预
采用30% CCl4-橄榄油溶液2 mL/kg皮下注射，每周2次，共计6周制备大鼠肝硬化模型。第7周开始，模型大鼠随机分为模型组（M组）、BMSC组、BMSCM2组，每组6只。在继续30% CCl4-橄榄油溶液造模的同时，予以2-AAF 10 mg·kg-1·d-1灌胃以抑制肝细胞增殖，制备CCl4/2-AAF大鼠肝硬化模型。于第7周开始，将BMSC和BMSCM2经尾静脉以单次注射的方式移植至大鼠体内，注射剂量为1×106 cells/只。同时设正常对照组（N组，n=6）。10周末取材，留取血清及肝组织标本。
1.6 血清生化学检测
血清ALT和AST活性检测由上海中医药大学附属曙光医院检验科完成。
1.7 肝组织Hyp含量测定
参考文献［12］中的方法使用试剂盒检测。
1.8 肝组织病理和免疫组化染色方法
石蜡固定组织切片，厚4 μm，以进行HE、天狼星红、免疫组化染色。参考文献［13］中的方法进行免疫组化。组织切片脱蜡修复封闭后，α-SMA（1∶2 000）、CD68（1∶1 000）、EpCam（1∶500）、Sox9（1∶1 000）、CK7（1∶400）、CK19（1∶1 000）、HNF-4α（1∶400）、Alb（1∶50）等一抗孵育1 h，HRP标记的二抗（1∶1 000）孵育30 min，洗涤，DAB显色，苏木精对比染色，Leica SCN 400扫描仪扫描。
1.9 RT-PCR
TNF-α、TGF-β1、CD68、α-SMA、EpCam、Sox9、CK7、CK19、HNF-4α、Alb mRNA表达采用定量RT-PCR方法检测。总RNA提取采用RNA纯化试剂盒（Lot.250800，Toyobo公司），mRNA表达检测采用SYBR Green real-time PCR Master Mix （SYBR）（Lot. 411900）（Toyobo公司，Osaka，Japan），以及ViiA™ 7 real-time PCR System（ABI，American）。引物由Takara公司设计合成（Takara Chemical）。SYBR一步法RT-PCR反应条件如下：42 ℃ 15 min、95 ℃ 2 min、95 ℃变性15 s，40个循环，60 ℃延伸退火1 min。
1.10 免疫印迹
肝组织采用RIPA 缓冲液裂解，4 ℃ 17 000 ×g离心10 min，测定上清液蛋白浓度，10%凝胶电泳，转移至PVDF膜上，5% BSA混合溶液封闭1 h，一抗4 ℃孵育过夜，α-SMA（1∶2 000）、CD68（1∶2 000）、GAPDH（1∶10 000）；二抗（1∶1 000）室温下孵育1 h，ECL法显影，使用image J分析计算灰度值积分。
1.11 统计学方法
采用SPSS 25.0统计软件进行数据分析。计量资料用
2. 结果
2.1 BMDM及BMSC的分离、培养与鉴定
本实验所分离的BMSC符合漩涡状生长的细胞形态（图1a），成骨诱导发现BMSC周围有明显茜素红染色的钙结节样沉淀物（图1b）。成脂诱导显示BMSC周围出现空泡样的脂滴，油红O染色脂滴呈橘红色（图1c）。流式细胞仪分析显示，M2-BMDM细胞CD206＋ 95.5%（图1d）；BMSC细胞CD45－ 99.9%，CD90＋ 99.9%，CD29＋ 99.9%，且G1期细胞占比为78.2%（图1e～f）。
注： a，BMSC镜下形态学观察（×100）；b，BMSC成骨诱导（茜素红染色，×100）；c，BMSC成脂诱导（油红O染色，×100）；d，M2-BMDM流式细胞鉴定；e，BMSC细胞周期检测；f，BMSC流式细胞鉴定。图 1 BMDM和BMSC鉴定Figure 1. BMDM and BMSC identification2.2 抑制肝脏炎症反应的作用比较
HE染色显示，M组大鼠肝组织可见大量肝细胞脂肪变性，纤维间隔可见大量炎性细胞浸润；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组大鼠肝组织炎性细胞浸润和脂肪变性明显减少，尤以BMSCM2组改善更为明显（图2a）。
注： a，HE染色（×200）；b，CD68免疫组化染色（×200）；c，血清ALT、AST活性；d，肝组织TNF-α、TGF-β1及CD68 mRNA表达水平；e，肝组织CD68免疫印迹；f，肝组织CD68免疫印迹灰度积分比值。图 2 BMSCM2抑制肝脏炎症反应Figure 2. BMSCM2 inhibits hepatic inflammatory response血清学检测结果显示，与N组比较，M组大鼠血清ALT、AST活性显著升高（P值均<0.01）；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组ALT、AST活性显著降低（P值均<0.01），且BMSCM2组ALT、AST活性显著低于BMSC组（P值均<0.05）（图2c）。
此外，与N组比较，M组肝组织TNF-α、TGF-β1、CD68 mRNA表达水平显著增加（P值均<0.01）；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组TNF-α、TGF-β1
mRNA水平均显著降低（P值均<0.05），且BMSCM2组TNF-α、TGF-β1 mRNA水平显著低于BMSC组（P值均<0.05）（图2d）。CD68的免疫组化及蛋白印迹显示相同的趋势（图2e～f）。 2.3 抑制肝硬化进展的作用比较
天狼星红胶原染色显示，M组大鼠肝组织胶原沉积明显增加，已形成完整假小叶结构；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组胶原沉积明显减轻，尤以BMSCM2组改善更为明显（图3）。
图 3 天狼星红染色和α-SMA免疫组化染色结果（×200）Figure 3. Sirius red staining and α-SMA immunohistochemical staining results（×200）肝组织Hyp含量检测显示，与N组比较，M组Hyp含量显著增加（P<0.01）；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组Hyp含量显著降低（P<0.05）（图4a）。免疫组化染色显示，与N组比较，M组肝组织α-SMA阳性表达明显增加；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组α-SMA阳性表达均明显减少，且BMSCM2组更优（图3）。α-SMA mRNA表达水平及蛋白印迹结果与免疫组化染色结果相吻合，且BMSCM2组均显著低于BMSC组（P<0.01）（图4b～d）。
注： a，肝组织Hyp含量；b，肝组织α-SMA mRNA表达水平；c，肝组织α-SMA免疫印迹；d，肝组织α-SMA免疫印迹灰度积分比值。图 4 BMSCM2抑制肝硬化进展Figure 4. BMSCM2 inhibits the progression of liver cirrhosis2.4 抑制肝祖细胞增殖的作用比较
免疫组化染色显示，与N组比较，M组大鼠肝组织EpCam、Sox9阳性表达明显增加；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组EpCam、Sox9阳性表达明显减少，尤以BMSCM2组改善最佳（图5）。EpCam及Sox9 mRNA表达水平与免疫组化染色相吻合，且BMSCM2组EpCam mRNA水平显著低于BMSC组（P<0.05）（图6）。
图 5 EpCam和Sox9免疫组化染色结果（×200）Figure 5. Immunohistochemical staining results of EpCam and Sox9 （×200）2.5 抑制胆管反应的作用比较
免疫组化染色显示，与N组比较，M组大鼠肝组织CK7和CK19阳性表达明显增加；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组大鼠肝组织CK7和CK19表达明显减少，尤以BMSCM2组改善更佳（图7）。肝组织CK7和CK19 mRNA表达水平显示相同趋势，且BMSCM2组CK19 mRNA水平显著低于BMSC组（P<0.05）（图8）。
图 7 CK7和CK19免疫组化染色结果（×200）Figure 7. Immunohistochemical staining results of CK7 and CK19 （×200）2.6 促进肝细胞增殖的作用比较
免疫组化染色显示，与N组比较，M组大鼠肝组织HNF-4α和Alb阳性表达明显减少；与M组比较，BMSC组和BMSCM2组HNF-4α和Alb表达明显增加，尤以BMSCM2组更为明显（图9）。HNF-4α及Alb mRNA表达与免疫组化染色结果相吻合，且BMSCM2组HNF-4α显著高于BMSC组（P<0.05）（图10）。
图 9 HNF-4α和Alb免疫组化染色结果（×200）Figure 9. Immunohistochemical staining results of HNF-4α and Alb （×200）3. 讨论
巨噬细胞起源于单核细胞前体，具有吞噬、抗原提呈等多种功能，在组织稳态和宿主防御中发挥重要作用［14］。肝脏中的巨噬细胞主要由肝脏Kupffer细胞和浸润的单核巨噬细胞构成。在慢性肝损伤时，巨噬细胞可通过释放促炎细胞因子或趋化因子等激活肝星状细胞（HSC），使其转化为肌成纤维细胞，分泌大量的细胞外基质（ECM），最终导致肝纤维化的发生与发展［15］。同时，巨噬细胞具有高度的可塑性，其可根据环境信号快速地在促炎（M1）和抗炎（M2）之间进行表型转换，称之为巨噬细胞极化［16］。M1和M2巨噬细胞在转录表达谱、细胞表面标志、细胞因子等方面均具有高度异质性，对纤维化肝脏ECM沉积和组织重建发挥双重调节作用［17］。
间充质干细胞（mesenchymal stem cell，MSC）来源于骨髓、脂肪、脐带、皮肤、骨骼肌等多种组织［18］，具有良好的自我增殖与多向分化潜能，获取容易，培养简单，免疫原性低［19］。近年来，MSC在肝硬化的治疗领域显示出广阔的应用前景［20］，其中BMSC被认为是最具有肝细胞再生能力的干细胞群体［5］。MSC治疗肝硬化的机制十分复杂，如移植的MSC可分化为肝细胞样细胞［21］；促进肝脏巨噬细胞由M1向M2转化，抑制HSC活化，促进M2巨噬细胞分泌MMP13，促进胶原降解［22-23］；通过旁分泌功能表达各种细胞因子、趋化因子、生长因子以及外泌体等，间接和远程促进受损肝组织修复等［24］。
课题组前期研究［10］表明体外诱导分化的M1-BMDM和M2-BMDM对CCl4诱导大鼠肝纤维化均具有良好的干预效应，两者均可通过抑制肝脏炎症反应和HSC活化，或促进肝脏巨噬细胞活化并释放MMP9、MMP13，促进ECM的降解，且M2-BMDM的综合干预作用优于M1-BMDM。此外，课题组前期研究［11］表明BMSC移植可有效抑制大鼠胆汁性肝纤维化进展。但目前尚不清楚M2-BMDM是否可影响BMSC对肝硬化的治疗效应。本研究将来源于M2-BMDM微环境的BMSC（BMSCM2）经尾静脉注入CCl4/2-AAF诱导的大鼠肝硬化模型体内，结果表明BMSC和BMSCM2均可显著抑制肝脏炎症反应和肝硬化进展，且BMSCM2显示出比BMSC更优的治疗作用。
HSC活化是肝纤维化发生发展的关键细胞学基础［25］，TNF-α和TGF-β1主要来源于活化的肝脏巨噬细胞，是促进HSC活化的关键细胞因子，参与HSC的活化并促进其产生大量ECM［26-27］。本研究结果显示BMSCM2注射可显著降低肝组织α-SMA的蛋白表达以及α-SMA、TNF-α和TGF-β1的mRNA表达，其作用显著优于BMSC，提示与M2-BMDM共培养后的BMSC可进一步提高对HSC活化的抑制作用，这可能与M2-BMDM影响BMSC对肝脏巨噬细胞极化功能，或影响BMSC的旁分泌功能等有关。
EpCam和Sox9是公认的肝祖细胞增殖的标志物［28-29］。胆管反应是各种慢性肝病常见病理改变，在肝硬化的发生与发展中发挥重要作用，CK7和CK19是公认的胆管上皮细胞标志物［30］。课题组前期研究［31］结果表明，在CCl4/2-AAF诱导的大鼠肝硬化模型中，2-AAF可剂量依赖性地促进肝祖细胞活化并向肌成纤维细胞和胆管细胞分化，促进肝硬化进展。本研究发现，BMSC和BMSCM2注射后均能显著抑制肝组织EpCam、Sox9、CK7和CK19的表达水平，显著增加肝细胞标志物HNF-4α和Alb的表达水平，且BMSCM2优于BMSC。提示BMSC和BMSCM2治疗肝硬化的机制可能与抑制肝祖细胞增殖及其向胆管细胞分化，促进肝再生有关，且BMSCM2的治疗作用更为突出，这可能与M2-BMDM影响BMSC在肝硬化肝脏内的分化方向有关，也有可能通过促进BMSC分泌调节性细胞因子如肝细胞生长因子、神经生长因子等刺激肝细胞再生有关［32］。
综上所述，BMSC在肝硬化治疗领域已经取得长足发展，但M2-BMDM是否可提高BMSC的治疗效应尚未见报道。本研究结果证实来源于M2-BMDM微环境的BMSC经外周注射能够进一步提高BMSC治疗肝硬化的效应，其机制与抑制肝脏炎症反应及HSC活化，抑制肝祖细胞增殖及胆管反应，促进肝细胞增殖等有关，为进一步提高BMSC的肝硬化治疗作用提供了新思路。
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注： a，正离子模式下PCA得分图；b，负离子模式下PCA得分图；c，正离子模式下OPLS-DA图；d，负离子模式下OPLS-DA图。
图 1 超重NAFLD组与超重对照组血清脂质多元统计分析结果
Figure 1. Multivariate statistical analysis of serum lipids in overweight NAFLD group and overweight control group
注： 与超重对照组相比，红色表示在超重NAFLD组中上调，蓝色表示在超重NAFLD组中下调。PC，磷脂酰胆碱；SM，鞘磷脂；PE，磷脂酰乙醇胺；LPC，溶血磷脂酰胆碱；DG，双甘脂；Cer，神经酰胺；PG，磷脂酰甘油；PS，磷脂酰丝氨酸；PI，磷脂酰肌醇；LPE，溶血磷脂酰乙醇胺。
图 2 两组中各类脂质含量的比较
Figure 2. Comparison of the contents of lipids between the two groups
注： CE，胆固醇酯；LPA，溶血磷脂酸；MG，单硬脂酸甘油酯；So，鞘氨醇。
图 3 超重NAFLD组与超重对照组差异脂质的火山图
Figure 3. Volcanic diagram of lipids in overweight NAFLD group and overweight control group
注： a，Cer总量；b，PC总量；c，PE总量；d，PG总量；e，PI总量；f，PS总量；g，LPC总量；h，LPE总量；i，SM总量；j，FA总量；k，DG总量；l，TG总量。
图 4 超重NAFLD组与超重对照组血清脂质类别的比较
Figure 4. Comparison of serum lipids between overweight NAFLD group and overweight control group
注： a，TG不饱和键数≤3；b，TG不饱和键数>3。
图 5 超重NAFLD组与超重对照组血清TG水平比较
Figure 5. Comparison of serum triglycerides between overweight NAFLD group and overweight control group
表 1 超重NAFLD组与超重对照组一般资料及血液生化指标比较
Table 1. Comparison of general data and blood biochemical indexes between NAFLD group and healthy control group in overweight people
临床指标 超重NAFLD组（n=62） 超重对照组（n=50） 统计值 P值 男/女（例） 42/20 28/22 χ2=1.628 0.202 年龄（岁） 43.73±14.63 49.48±14.72 t=-2.064 0.041 身高（cm） 168.60±8.32 164.66±9.77 t=2.302 0.023 体质量（kg） 75.56±10.64 69.24±9.45 t=3.285 0.001 BMI（kg/m2） 26.15（24.90～27.73） 25.30（23.68～26.95） Z=-2.365 0.018 WBC（×109/L） 6.3（5.2～7.2） 5.9（5.1～6.9） Z=-1.016 0.310 RBC（%） 4.84（4.56～5.13） 4.59（4.33～4.83） Z=-3.348 0.001 Hb（g/L） 150.5（139.5～159.0） 143.0（127.0～150.8） Z=-2.916 0.004 Hct（%） 44.1（41.5～46.4） 41.9（38.4～44.6） Z=-3.085 0.002 MCV（fL） 90.9（88.0～93.4） 91.4（88.5～93.2） Z=-0.386 0.699 MCH（pg） 30.95（29.80～31.83） 30.75（30.08～31.50） Z=-0.018 0.986 MCHC（g/L） 338.00（331.75～345.25） 337.50（332.00～341.25） Z=-0.346 0.730 PLT（×109/L） 234.55±61.66 222.08±58.89 t=1.085 0.280 RDW（×1012/L） 12.5（12.1～13.2） 12.4（12.0～12.9） Z=-1.035 0.301 MPV（fL） 10.69±1.31 10.60±1.31 t=0.371 0.711 中性粒细胞（%） 57.01±8.70 56.87±9.60 t=0.080 0.936 淋巴细胞（%） 32.48±8.43 32.72±8.56 t=-0.145 0.885 单核细胞（%） 7.4（6.1～8.6） 6.8（6.0～8.3） Z=-0.480 0.631 嗜酸性粒细胞（%） 2.1（1.4～3.3） 1.8（1.2～3.8） Z=-0.659 0.510 嗜碱性粒细胞（%） 0.5（0.4～0.7） 0.6（0.4～0.8） Z=-0.186 0.853 尿素（mmol/L） 5.4（4.5～6.2） 5.1（4.1～6.1） Z=-1.243 0.214 肌酐（μmol/L） 74.0（68.0～83.3） 71.0（60.8～78.0） Z=-1.722 0.085 尿酸（μmol/L） 401.0（336.3～483.0） 356.0（289.5～422.8） Z=-2.519 0.012 GFR（mL/min） 94.90（80.26～105.43） 96.89（84.84～113.68） Z=-0.914 0.360 TBil（μmol/L） 14.5（11.0～19.3） 15.0（9.0～20.0） Z=-0.708 0.479 DBil（μmol/L） 2.7（1.9～3.8） 2.6（1.7～3.4） Z=-0.514 0.607 ALP（U/L） 79（69～89） 71（57～87） Z=-2.008 0.045 TP（g/L） 75（72～77） 72（69～74） Z=-3.074 0.002 Alb（g/L） 44（42～46） 44（42～45） Z=-1.198 0.231 Glb（g/L） 30（28～32） 29（26～31） Z=-2.353 0.019 GGT（U/L） 33（23～42） 26（15～40） Z=-2.186 0.029 ChE（U/L） 9 030.50（8 058.25～10 146.25） 8 102.00（7 276.50～8 879.00） Z=-3.894 0.001 ALT（U/L） 17（13～27） 14（10～22） Z=-2.195 0.028 AST（U/L） 26（21～31） 22（18～29） Z=-2.066 0.039 HDL（μmol/L） 1.11（0.99～1.25） 1.16（1.02～1.43） Z=-1.448 0.148 LDL（μmol/L） 3.51（3.12～3.97） 3.11（2.62～3.76） Z=-2.476 0.013 TC（μmol/L） 5.08（4.76～6.09） 4.66（4.06～5.67） Z=-2.510 0.012 TG（μmol/L） 1.78（1.28～2.58） 1.36（0.97～1.87） Z=-2.700 0.007 ApoA1（g/L） 1.34（1.24～1.44） 1.31（1.19～1.46） Z=-0.445 0.656 ApoB（g/L） 1.04（0.89～1.17） 0.89（0.73～1.06） Z=-3.178 0.001 Glu（mmol/L） 5.4（4.9～6.1） 5.0（4.6～5.3） Z=-3.238 0.001 注：WBC，白细胞；RBC，红细胞；Hb，血红蛋白；Hct，红细胞比容；MCV，平均红细胞体积；MCH，平均红细胞血红蛋白量；MCHC，红细胞平均血红蛋白浓度；PLT，血小板；RDW，红细胞体积分布宽度；MPV，平均血小板体积；GFR，肾小球滤过率；TBil，总胆红素；DBil，直接胆红素；ALP，碱性磷酸酶；TP，总蛋白；Alb，白蛋白；Glb，球蛋白；GGT，γ-谷氨酰基转移酶；ChE，胆碱酯酶；ALT，谷丙转氨酶；AST，谷草转氨酶；HDL，高密度脂蛋白；LDL，低密度脂蛋白；TC，总胆固醇；ApoA1，载脂蛋白A1；ApoB，载脂蛋白B；Glu，血糖。 
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