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咖啡酸苯乙酯对肝星状细胞的作用及机制分析

杨宁 邓江 王怡恺 常莎 高宁 王文俊 党双锁 石娟娟

引用本文:
Citation:

咖啡酸苯乙酯对肝星状细胞的作用及机制分析

DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.10.014
基金项目: 

陕西省重点研发计划 (2021SF-227);

中央高校基本科研业务费专项资金资助 (xjh012019063)

利益冲突声明:本研究不存在研究者、伦理委员会成员以及与公开研究成果有关的利益冲突。
作者贡献声明:杨宁、石娟娟、党双锁负责课题设计,资料分析,撰写论文;邓江、王怡恺、王文俊参与收集数据,数据分析;杨宁、邓江、王怡恺、常莎、高宁负责课题实验,实验数据分析;杨宁、石娟娟、党双锁负责拟定写作思路,指导撰写文章并最后定稿。
详细信息
    通信作者:

    石娟娟, shijuan0307@163.com

Role and mechanism of caffeic acid phenethyl ester in hepatic stellate cell

Research funding: 

Shaanxi Key Research and Development Project (2021SF-227);

Fundamental Research Funds for the Central Universities (xjh012019063)

More Information
  • 摘要:   目的  探讨咖啡酸苯乙酯(CAPE)对大鼠肝星状细胞(HSC)-T6的作用及作用机制。  方法  不同浓度CAPE(5、10、15 μmol/L) 分别作用于HSC-T6细胞,同时构建GFP-LC3质粒转染至HSC-T6细胞,自噬诱导剂雷帕霉素和自噬抑制剂3-Methyladenine(3-MA)进行干预,采用MTT方法检测CAPE对HSC-T6细胞增殖的影响,透射电镜观察CAPE对HSC-T6细胞超微结构的影响,细胞免疫荧光实验检测CAPE对HSC-T6细胞LC3表达的影响,qRT-PCR检测自噬相关基因ATG5、ATG7、ATG12、Beclin1和LC3 mRNA的表达情况,Western-Blot检测ATG7、Beclin1、LC3I/Ⅱ、p-AKT/AKT、p-mTOR蛋白的表达情况。计量资料组间比较采用单因素方差分析及Dunnett-t检验。  结果  CAPE干预组较对照组可抑制HSC-T6细胞增殖,且生长明显受到抑制,细胞质中可观察到脂滴和轮盘状自噬体散在分布。与对照组(13.34%±2.59%)相比,不同浓度CAPE 5 μmol/L (23.68%±3.76%,t=-5.553,P<0.001)、10 μmol/L(43.47%±3.83%,t=-15.958,P<0.001)、15 μmol/L(57.25%±2.78%,t=-28.334,P<0.001)的LC3荧光染色均显著增强,且呈正相关。CAPE干预组(10、15 μmol/L)ATG5、ATG7、ATG12、Beclin1和LC3 mRNA水平明显增加(P值均<0.05)。GFP-LC3质粒转染至HSC-T6细胞后,CAPE干预组(79.01%±6.69%)较对照组(67.06%±6.74%)LC3荧光染色明显增强(t=-3.083,P=0.012);同时给予自噬诱导剂雷帕霉素(86.88%±5.42%),LC3表达较CAPE组明显增强(t=-2.239,P=0.049);而给予自噬抑制剂3-MA(71.22%±4.29%),其表达则明显减低(t=-2.404,P=0.037);CAPE干预组和诱导剂雷帕霉素组ATG7、Beclin1和LC3 I/Ⅱ的蛋白表达水平增加,AKT/p-AKT、p-mTOR蛋白的表达水平降低;而抑制剂3-MA组则得出相反的结果。  结论  CAPE可能通过抑制AKT/mTOR信号通路诱导自噬形成,进而抑制HSC-T6细胞增殖。

     

  • 图  1  不同浓度CAPE对HSC-T6细胞超微结构影响

    注:黑色箭头,内质网;黄色箭头,线粒体;红色箭头,自噬体;最上方标尺5 μm,中间标尺1 μm,最下方标尺0.5 μm。

    Figure  1.  Transmission electron microscope (TEM) detection of ultrastructure in HSC-T6 cells with CAPE treatment

    图  2  CAPE对LC3蛋白表达的影响

    注:a, LC3蛋白萤光染色情况;b, LC3蛋白萤光的定量分析。

    Figure  2.  The expression levels of LC3 in HSC-T6 cells with CAPE treatment

    图  3  CAPE下调AKT/mTOR信号通路诱导自噬形成

    注:a, 不同干预情况下,LC3蛋白荧光染色情况;b,LC3蛋白荧光的定量分析;c,不同浓度CAPE对AKT/mTOR信号通路相关蛋白表达的影响。

    Figure  3.  CAPE induce autophagy to inhibit HSC-T6 cells proliferation by the AKT/mTOR signaling pathway

    表  1  Real-time PCR引物序列

    Table  1.   Primes of Real-time PCR

    基因 引物 温度(℃) 长度(bp) 来源
    ATG5 F 5′-TCAGTGGAGGCAACAGAACC-3′ 55.49 20 大鼠
    R 5′-TTCACTGAGCAAAAGCGTGC-3′ 55.71 20 大鼠
    ATG7 F 5′-GAGACCGTCTGAGCAACCAC-3′ 56.38 20 大鼠
    R 5′-GATGACACAGGAAAGGGTGC-3′ 54.5 20 大鼠
    ATG12 F 5′-CGGACTGTCCAAGCACTCAT-3′ 55.68 20 大鼠
    R 5′-CCCATGCCTGTGATTTGCAG-3′ 55.49 20 大鼠
    LC3 F 5′-CGGGTTGAGGAGACACACAA -3′ 55.53 20 大鼠
    R 5′-ATGAGCCGGACATCTTCCAC -3′ 55.44 20 大鼠
    Beclin1 F 5′-GAATGGAGGGGTCTAAGGCG -3′ 55.52 20 大鼠
    R 5′-GAATGGTCACTCGGTCCAGG -3′ 55.76 20 大鼠
    β-actin F 5′-GGAGATTACTGCCCTGGCTCCTA-3′ 60.2 23 大鼠
    R 5′-GACTCATCGTACTCCTGCTTGCTG-3′ 59.3 24 大鼠
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    表  2  CAPE对自噬相关的基因表达的影响

    Table  2.   The expression levels of autophagy-related genes in HSC-T6 cells with CAPE treatment

    指标 对照组 CAPE F 方差分析的P
    5 μmol/L 10 μmol/L 15 μmol/L
    ATG5 1.02±0.01 1.06±0.04 1.46±0.091) 2.43±0.421) 15.770 <0.05
    ATG7 1.05±0.02 1.08±0.04 3.30±0.231) 5.44±0.151) 665.826 <0.01
    ATG12 1.01±0.06 1.07±0.03 2.33±0.081) 3.80±0.171) 585.839 <0.01
    Becline1 0.99±0.08 1.07±0.05 1.55±0.071) 2.44±0.131) 182.940 <0.01
    LC3 1.08±0.04 1.12±0.10 1.55±0.111) 2.38±0.271) 44.963 <0.01
    注:与对照组比较,1)P<0.01。
    下载: 导出CSV
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出版历程
  • 收稿日期:  2022-03-15
  • 录用日期:  2022-04-21
  • 出版日期:  2022-10-20
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