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P2RY8在肝细胞癌组织中表达的生物信息学分析及其临床意义

梅儒齐 鞠倩 李曰平 刘诚聪

引用本文:
Citation:

P2RY8在肝细胞癌组织中表达的生物信息学分析及其临床意义

DOI: 10.3969/j.issn.1001-5256.2022.08.020
基金项目: 

青岛市民生科技计划项目 (15-9-2-80-nsh);

青岛市2020年度中医药科研计划项目 (2020-zyy026)

伦理学声明:本研究方案于2017年1月6日经由上海芯超生物科技有限公司伦理委员会审批,批号:SHYJS-CP-1701002,所纳入患者均签署知情同意书。
利益冲突声明:本研究不存在研究者、伦理委员会成员以及与公开研究成果有关的利益冲突,特此声明。
作者贡献声明:梅儒齐负责课题设计,资料分析,撰写论文;梅儒齐、鞠倩、李曰平参与收集数据,修改论文;刘诚聪负责拟定写作思路,指导撰写文章并最后定稿。
详细信息
    通信作者:

    刘诚聪,84285161@163.com

A bioinformatics analysis of P2RY8 expression in hepatocellular carcinoma and its clinical significance

Research funding: 

People's Livelihood Science and Technology Project of Qingdao (15-9-2-80-nsh)

Traditional Chinese Medicine Scientific Research Project of Qingdao in 2020 (2020-zyy026)

More Information
    Corresponding author: LIU Chengcong, 84285161@163.com(ORCID: 0000-0001-7399-3312)
  • 摘要:   目的  本研究旨在探讨人B淋巴细胞限制受体P2RY8在肝细胞癌(HCC)诊断和预后中的应用价值,并分析了其与肿瘤免疫的关系。  方法  利用肿瘤基因组图谱(TCGA)数据库比较P2RY8的表达情况。采用R软件包分析P2RY8与肿瘤分期的相关性,建立诊断及生存的受试者工作特征(ROC)曲线和Nomogram模型。利用肿瘤免疫评估资源(TIMER)分析免疫细胞浸润、免疫细胞生物标志物和免疫检查点。使用STRING数据库分析蛋白质-蛋白质相互作用网络信息。通过基因本体论(GO)分析和京都基因与基因组百科全书(KEGG)分析P2RY8及其互作基因的功能。收集2007年6月—2008年11月行肝癌根治性手术的64例患者HCC组织及其中35例对应的癌旁组织(组织芯片购自上海芯超生物科技有限公司)进行验证,统计其临床资料及随访资料,采用免疫组化法检测HCC及癌旁组织标本中P2RY8的表达情况。符合正态分布的计量资料两组间比较采用t检验;非正态分布的计量资料两组间比较采用Mann-Whitney U检验,多组间比较采用Kruskal-Wallis H检验。计数资料两组间比较采用χ2检验。两变量间的相关性采用Spearman相关分析。应用Kaplan-Meier绘制生存曲线,log-rank检验计算生存率。  结果  P2RY8在HCC中过表达,可通过P2RY8的表达水平准确鉴别肿瘤与正常组织(ROC曲线下面积为0.794)。P2RY8高表达的患者预后较好(P=0.005)。64例临床样本数据同样证实P2RY8高表达的肝癌患者术后3年生存率(78.9% vs 46.2%,P=0.007)、5年生存率(76.3% vs 38.5%,P=0.002)和OS[92.5(48.8~102.0)个月vs 33.0(25.0~95.5)个月,P=0.022]显著高于低表达者,Kaplan-Meier生存曲线进一步表明P2RY8表达水平与HCC患者预后相关。此外,P2RY8在HCC中与免疫细胞浸润和免疫检查点呈正相关。GO/KEGG通路富集分析显示P2RY8在体液免疫、细胞免疫等信号转导通路中均有富集。  结论  P2RY8不仅参与了HCC的发生发展,还参与其免疫调节。因此,P2RY8可以作为一个潜在的HCC诊断和预后的生物标志物和治疗靶点。

     

  • 图  1  P2RY8表达与HCC分期的关系

    Figure  1.  Relationship between P2RY8 expression levels and staging of hepatocellular carcinoma

    图  2  P2RY8表达与HCC预后的关系

    注:P2RY8在HCC中高和低表达患者的OS(a)、疾病特异性生存期(b)和无进展间期(c)生存曲线;d,P2RY8表达的多因素Cox分析。

    Figure  2.  Relationship between P2RY8 expression levels and prognosis of hepatocellular carcinoma

    图  3  P2RY8的ROC曲线分析及Nomogram模型

    注:a,诊断区分肿瘤与正常组织的ROC曲线;b,时间依赖生存ROC曲线分析预测1、3、5年生存率;c,Nomogram模型,结合临床分期和P2RY8水平预测1、3、5年生存率。

    Figure  3.  ROC analysis and Nomogram model of P2RY8

    图  4  HCC中P2RY8与免疫细胞浸润相关性的棒棒糖图

    Figure  4.  Correlations between P2RY8 expression levels and immune cell infiltration in hepatocellular carcinoma

    图  5  预测P2RY8高表达组与低表达组间免疫反应得分的分布情况

    Figure  5.  Predicting the distribution of immune response score between P2RY8 high expression group and low expression group

    图  6  HCC组织内P2RY8的表达情况(DAB显色+苏木紫染色,×200)

    注:a,阴性表达;b,弱阳性表达;c,中阳性表达;d,强阳性表达。

    Figure  6.  Expression of P2RY8 in hepatocellular carcinoma (DAB+Sappanwood violet staining, ×200)

    图  7  64例HCC患者P2RY8表达水平与术后总生存期的Kaplan-Meier生存曲线分析

    Figure  7.  Kaplan-Meier survival curve analysis of P2RY8 expression level and postoperative overall survival in 64 HCC patients

    表  1  TCGA数据库中HCC的单因素和多因素生存分析

    Table  1.   Univariate and multivariate survival analysis of hepatocellular carcinoma

    参数 例数 单因素分析 多因素分析
    HR(95%CI) P HR(95%CI) P
    T分期 370
        T1 183
        T2 94 1.428 (0.901~2.264) 0.129 1.558 (0.865~2.808) 0.140
        T3+T4 93 2.949 (1.982~4.386) <0.001 3.031 (1.832~5.016) <0.001
    N分期 258
        N0 254
        N1 4 2.029 (0.497~8.281) 0.324
    M分期 272
        M0 268
        M1 4 4.077 (1.281~12.973) 0.017 2.769 (0.826~9.283) 0.099
    P2RY8 373 0.766 (0.627~0.935) 0.009 0.754 (0.589~0.966) 0.025
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    表  2  HCC中P2RY8表达与免疫细胞标志物的相关性分析

    Table  2.   Correlation analysis of P2RY8 expression and immune cell markers in hepatocellular carcinoma

    免疫细胞 生物标志物 r P
    B淋巴细胞 CD19 0.271 <0.001
    CD20(KRT20) -0.040 0.443
    CD38 0.315 <0.001
    CD8+T淋巴细胞 CD8A 0.379 <0.001
    CD8B 0.321 <0.001
    Tfh BCL6 0.086 0.095
    ICOS 0.364 <0.001
    CXCR5 0.300 <0.001
    Th1 T-bet(TBX21) 0.451 <0.001
    STAT1 0.250 <0.001
    STAT4 0.237 <0.001
    IL12RB2 0.267 <0.001
    WSX1(IL27RA) 0.290 <0.001
    IFNγ(IFNG) 0.230 <0.001
    TNFα(TNF) 0.259 <0.001
    Th2 CCR3 0.064 0.215
    GATA3 0.369 <0.001
    STAT5A 0.375 <0.001
    STAT6 0.149 0.004
    Th9 IRF4 0.390 <0.001
    PU.1(SPI1) 0.346 <0.001
    TGFBR2 0.444 <0.001
    Th17 IL-17A 0.127 0.014
    IL-21R 0.369 <0.001
    IL-23R 0.279 <0.001
    STAT3 0.269 <0.001
    Th22 AHR 0.109 0.035
    CCR10 0.110 0.034
    Treg CCR8 0.332 <0.001
    CD25(IL2RA) 0.336 <0.001
    FOXP3 0.194 <0.001
    M1巨噬细胞 COX2(PTGS2) 0.408 <0.001
    INOS(NOS2) 0.247 <0.001
    IRF5 0.147 0.004
    M2巨噬细胞 ARG1 0.013 0.795
    CD206(MRC1) 0.376 <0.001
    CD115(CSF1R) 0.420 <0.001
    肿瘤相关巨噬细胞 PDCD1LG2 0.466 <0.001
    CD80 0.315 <0.001
    CD40 0.132 0.011
    TLR7 0.400 <0.001
    自然杀伤细胞 CD7 0.230 <0.001
    KIR3DL1 0.271 <0.001
    XCL1 0.146 0.005
    中性粒细胞 CD11b(ITGAM) 0.174 <0.001
    CD15(FUT4) 0.151 0.004
    CD66b(CEACAM8) -0.039 0.456
    树突状细胞 CD1C 0.439 <0.001
    CD11c(ITGAX) 0.336 <0.001
    CD141(THBD) 0.537 <0.001
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    表  3  64例HCC患者中P2RY8表达水平与临床特征及预后之间的关系

    Table  3.   The relationship between P2RY8 expression level and clinical characteristics and outcomes in 64 HCC patients

    参数 P2RY8表达水平 统计值 P
    高表达组(n=38) 低表达组(n=26)
    年龄(岁) 52.3±9.0 53.0±10.4 t=0.318 0.751
    男[例(%)] 34(89.5) 22(84.6) χ2=0.333 0.564
    既往HBV或HCV感染[例(%)] 31(81.6) 21(80.8) χ2=0.804 0.804
    肝硬化[例(%)] 33(86.8) 23(88.5) χ2=0.406 0.524
    AFP(μg/L) 122.5(7.8~929.5) 242.0(6.5~3133.0) Z=-0.548 0.584
    TBil(μmol/L) 12.3(9.9~20.9) 13.0(10.4~16.5) Z=-0.358 0.720
    ALT(U/L) 38.0(24.0~71.8) 41.0(21.0~70.0) Z=-0.499 0.618
    GGT(U/L) 46.0(31.8~108.8) 69.0(40.5~105.0) Z=-1.131 0.258
    Alb(g/dL) 4.4±0.6 4.2±0.4 t=1.286 0.203
    肿瘤数目>1[例(%)] 3(7.9) 3(11.5) χ2=0.241 0.623
    肿瘤大小(cm) 3.0(2.0~5.3) 6.0(3.8~8.3) Z=-3.030 0.002
    TNM分期Ⅱ~Ⅲ期[例(%)] 9(23.7) 10(38.5) χ2=1.615 0.204
    1年生存[例(%)] 37(97.4) 23(88.5) χ2=2.090 0.148
    3年生存[例(%)] 30(78.9) 12(46.2) χ2=7.359 0.007
    5年生存[例(%)] 29(76.3) 10(38.5) χ2=9.293 0.002
    PFS(月) 47.0(14.0~54.0) 21.0(8.0~53.0) Z=-1.068 0.285
    OS(月) 92.5(48.8~102.0) 33.0(25.0~95.5) Z=-2.295 0.022
    下载: 导出CSV
  • [1] MCGLYNN KA, PETRICK JL, LONDON WT. Global epidemiology of hepatocellular carcinoma: an emphasis on demographic and regional variability[J]. Clin Liver Dis, 2015, 19(2): 223-238. DOI: 10.1016/j.cld.2015.01.001.
    [2] SUNG H, FERLAY J, SIEGEL RL, et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2021, 71(3): 209-249. DOI: 10.3322/caac.21660.
    [3] COURI T, PILLAI A. Goals and targets for personalized therapy for HCC[J]. Hepatol Int, 2019, 13(2): 125-137. DOI: 10.1007/s12072-018-9919-1.
    [4] KANWAL F, SINGAL AG. Surveillance for hepatocellular carcinoma: current best practice and future direction[J]. Gastroenterology, 2019, 157(1): 54-64. DOI: 10.1053/j.gastro.2019.02.049.
    [5] KIRKIN V, DIKIC I. Ubiquitin networks in cancer[J]. Curr Opin Genet Dev, 2011, 21(1): 21-28. DOI: 10.1016/j.gde.2010.10.004.
    [6] TANDON P, GARCIA-TSAO G. Prognostic indicators in hepatocellular carcinoma: a systematic review of 72 studies[J]. Liver Int, 2009, 29(4): 502-510. DOI: 10.1111/j.1478-3231.2008.01957.x.
    [7] EL-KHOUEIRY AB, SANGRO B, YAU T, et al. Nivolumab in patients with advanced hepatocellular carcinoma (CheckMate 040): an open-label, non-comparative, phase 1/2 dose escalation and expansion trial[J]. Lancet, 2017, 389(10088): 2492-2502. DOI: 10.1016/S0140-6736(17)31046-2.
    [8] YAU T, PARK JW, FINN RS, et al. CheckMate 459: A randomized, multi-center phase Ⅲ study of nivolumab (NⅣO) vs sorafenib (SOR) as first-line (1L) treatment in patients (pts) with advanced hepatocellular carcinoma (aHCC)[J]. Ann Oncol, 2019, 30(5_suppl): 874-875. DOI: 10.1093/annonc/mdz394.029.
    [9] FINN RS, RYOO BY, MERLE P, et al. Results of KEYNOTE-240: phase 3 study of pembrolizumab (Pembro) vs best supportive care (BSC) for second line therapy in advanced hepatocellular carcinoma (HCC)[J]. J Clin Oncol, 2019, 37(15_suppl): 4004. DOI: 10.1200/JCO.2019.37.15_suppl.4004.
    [10] SCHMITZ R, WRIGHT GW, HUANG DW, et al. Genetics and pathogenesis of diffuse large B-cell lymphoma[J]. N Engl J Med, 2018, 378(15): 1396-1407. DOI: 10.1056/NEJMoa1801445.
    [11] MUPPIDI JR, SCHMITZ R, GREEN JA, et al. Loss of signalling via Gα13 in germinal centre B-cell-derived lymphoma[J]. Nature, 2014, 516(7530): 254-258. DOI: 10.1038/nature13765.
    [12] MUPPIDI JR, LU E, CYSTER JG. The G protein-coupled receptor P2RY8 and follicular dendritic cells promote germinal center confinement of B cells, whereas S1PR3 can contribute to their dissemination[J]. J Exp Med, 2015, 212(13): 2213-2222. DOI: 10.1084/jem.20151250.
    [13] LU E, WOLFREYS FD, MUPPIDI JR, et al. S-Geranylgeranyl-L-glutathione is a ligand for human B cell-confinement receptor P2RY8[J]. Nature, 2019, 567(7747): 244-248. DOI: 10.1038/s41586-019-1003-z.
    [14] PAGE EC, HEATLEY SL, EADIE LN, et al. HMGN1 plays a significant role in CRLF2 driven down syndrome leukemia and provides a potential therapeutic target in this high-risk cohort[J]. Oncogene, 2022, 41(6): 797-808. DOI: 10.1038/s41388-021-02126-4.
    [15] AYPAR U, TAYLOR J, GARCIA JS, et al. P2RY8-CRLF2 fusion-positive acute myeloid leukemia with myelodysplasia-related changes: response to novel therapy[J]. JCO Precis Oncol, 2020, 4: 152-160. DOI: 10.1200/PO.19.00294.
    [16] TOMCZAK K, CZERWIŃSKA P, WIZNEROWICZ M. The Cancer Genome Atlas (TCGA): an immeasurable source of knowledge[J]. Contemp Oncol (Pozn), 2015, 19(1A): A68-A77. DOI: 10.5114/wo.2014.47136.
    [17] RAVI R, NOONAN KA, PHAM V, et al. Bifunctional immune checkpoint-targeted antibody-ligand traps that simultaneously disable TGFβ enhance the efficacy of cancer immunotherapy[J]. Nat Commun, 2018, 9(1): 741. DOI: 10.1038/s41467-017-02696-6.
    [18] JIANG P, GU S, PAN D, et al. Signatures of T cell dysfunction and exclusion predict cancer immunotherapy response[J]. Nat Med, 2018, 24(10): 1550-1558. DOI: 10.1038/s41591-018-0136-1.
    [19] HE Y, GALLMAN AE, XIE C, et al. P2RY8 variants in lupus patients uncover a role for the receptor in immunological tolerance[J]. J Exp Med, 2022, 219(1): 7-33. DOI: 10.1084/jem.20211004.
    [20] GREAVES SA, PETERSON JN, STRAUCH P, et al. Active PI3K abrogates central tolerance in high-avidity autoreactive B cells[J]. J Exp Med, 2019, 216(5): 1135-1153. DOI: 10.1084/jem.20181652.
    [21] BOUMA G, BURNS SO, THRASHER AJ. Wiskott-Aldrich Syndrome: Immunodeficiency resulting from defective cell migration and impaired immunostimulatory activation[J]. Immunobiology, 2009, 214(9-10): 778-790. DOI: 10.1016/j.imbio.2009.06.009.
    [22] BOURNAZOS S, CORTI D, VIRGIN HW, et al. Fc-optimized antibodies elicit CD8 immunity to viral respiratory infection[J]. Nature, 2020, 588(7838): 485-490. DOI: 10.1038/s41586-020-2838-z.
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  • 收稿日期:  2022-04-27
  • 录用日期:  2022-05-28
  • 出版日期:  2022-08-20
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